Изготовление анатомических препаратов реферат
Обновлено: 03.07.2024
Список сокращений
ВСА — внутренняя сонная артерия
ВЯВ — внутренняя яремная вена
ТМО — твердая мозговая оболочка
Изучение анатомии центральной нервной системы является неотъемлемой частью в обучении нейрохирургов. Разработка новых и оптимизация существующих нейрохирургических доступов всецело зависят от детального изучения топографической анатомии головы и шеи на секционном материале. Окрашивание сосудов артериальной и венозной систем на секционном материале помогает детализировать васкуляризацию анатомических структур головного мозга.
В мировой литературе [1—6] описаны различные способы изготовления анатомических препаратов головного мозга человека с окраской сосудистого русла или альтернативной модели — голова коровы. Известные способы характеризуются значительными техническими сложностями и длительностью изготовления препаратов.
Нами разработан быстрый способ изготовления анатомических препаратов головного мозга человека с инъекцией артериальных и венозных сосудов силиконом разного цвета.
Материал и методы
Для изготовления препарата головного мозга человека с окрашиванием артериальных и венозных сосудов используется нефиксированный, цельный труп (голова не отсекается от тела), без патологии ЦНС, не позднее 48 ч после смерти.
Основные этапы изготовления препаратов.
1. Канюлирование магистральных сосудов шеи
На шее трупа в промежутке 1,5—2 см выделяются магистральные сосуды шеи (общие сонные артерии, внутренние яремные вены), которые берутся на зажимы. Выделенные внутренние сонные артерии (ВСА) канюлируются мягкими пластиковыми трубками соответствующего диаметра длиной около 15 см. Трубки со срезанным под углом 45° концом вставляются в просвет сосуда до упора (ориентировочно — до входа сосуда в основание черепа). Аналогично канюлируются внутренние яремные вены (ВЯВ). Трубки фиксируются в сосудах лигатурными шелковыми швами для обеспечения водонепроницаемости и предотвращения их случайного выхода из сосуда.
Диаметр трубки должен максимально соответствовать диаметру кровеносного сосуда для минимизации сопротивления при промывании сосудистого русла, а также для предотвращения противотока при последующих этапах окраски сосудистого русла силиконом.
2. Промывка артериальной и венозной систем
Промывка сосудов артериальной и венозной систем является важным этапом в изготовлении препарата. Помимо очищения сосудистого русла от сгустков крови, это позволяет выявить индивидуальные анатомические особенности артериальной и венозной систем.
Промывка начинается с введения прохладной воды в правую ВСА (с помощью 50 см 3 шприца) до появления чистых промывных вод из левой ВСА. Затем так же промывается левая ВСА до появления чистых промывных вод из правой ВСА. Далее подобным образом промывается венозное русло, начиная с правой ВЯВ.
Венозная система имеет бо́льшую емкость по сравнению с артериальной. Ее промывка без предыдущей промывки артериальной системы может способствовать повышению сопротивления в артериальной системе и препятствовать необходимому удалению сгустков крови из просвета сосудов. Для хорошей промывки сосудистого русла и освобождения его от кровяных сгустков достаточно 1500—2000 мл проточной воды. Ключевым моментом промывки сосудистого русла является оценка проходимости и анатомической вариабельности сосудов артериального круга большого мозга (виллизиева круга). В том случае если при промывке одной из ВСА промывные воды выходят из контралатеральной ВСА, это значит, что А1-сегмент состоятелен и имеется передняя соединительная артерия. Во время промывки артериального русла для обеспечения промывки задних соединительных артерий, вертебробазилярной системы и открытия потенциальных анастомозов важно регулировать поток воды, а именно: при промывке правой ВСА периодически пережимать левую ВСА и, наоборот, — пережимать правую ВСА при промывке левой ВСА. При промывке венозной системы каждая из ВЯВ также периодически пережимается для лучшего результата. После появления чистых промывных вод из противоположных сосудов рекомендуется, для предотвращения возможного отека вещества головного мозга, промыть сосудистое русло гипертоническим раствором NaCl 3—5% объемом 400—500 мл.
3. Приготовление раствора окрашенного силикона и заполнение им артериальной и венозной систем
В зависимости от задач исследования комплексным раствором инъецируется артериальная, венозная или обе сосудистые системы.
Необходимо фиксировать шприц резьбовым коннектором с трубкой — для предотвращения соскальзывания шприца во время нагнетения силиконовой массы. Комплексный раствор красного цвета шприцем объемом 50 см 3 вводят в правую ВСА через предварительно установленный катетер, избегая попадания воздуха в сосуд, до момента появления окрашенного силикона из левой ВСА. Затем левый сосуд пережимают и вводят еще около 10 мл силиконовой массы (для обеспечения заполнения ипсилатеральной ВСА и вертебробазилярной системы). В случае разобщенного виллизиева круга (недоразвития или отсутствия передних и/или задних соединительных артерий) переток комплексного раствора из одной внутренней сонной артерии в другую становится практически невозможным. В этом случае для полноценного двустороннего заполнения сосудистого русла головы (основание черепа и головной мозг) комплексный раствор необходимо вводить последовательно в обе внутренние сонные артерии. Процедура повторяется с контралатеральной стороны, после чего обе ВСА, заполненные силиконом, пережимаются.
Для заполнения венозной системы окрашенный в синий цвет силикон шприцем объемом 50 см 3 вводится через правую ВЯВ до момента появления силикона из левой ВЯВ, после чего процедура повторяется, начиная с левой ВЯВ.
Общий объем комплексного раствора, вводимого в ВСА, составляет около 60—80 мл, а вводимого в ВЯВ — около 80—100 мл. Нами экспериментально установлено, что введение комплексного раствора в артериальное сосудистое русло надо осуществлять под давлением 290—380 мм рт.ст., а в венозное русло — 220—260 мм рт.ст., именно такое давление необходимо для полноценного заполнения артериальной и венозной систем без риска повреждения стенок сосудов и предотвращения выхода комплексного раствора за пределы сосудистого русла.
Правильно выполненная процедура позволяет получить тотальное заполнение сосудистого русла, включая диплоические вены черепа. Через 40—60 мин введенный комплексный раствор затвердевает и можно приступать к диссекции.
При необходимости выделяют головной мозг из полости мозгового черепа: производится круговой распил черепа максимально близко к основанию, свод черепа отделяется; базальная ТМО по возможности полностью отсепаровывается от внутреннего основания черепа, пересекаются черепные нервы и магистральные сосуды. Ствол головного мозга отсекается на уровне большого (затылочный) отверстия, после чего головной мозг вместе с отсепарованной ТМО извлекается из полости черепа. Очень важно максимально сохранить базальную твердую мозговую оболочку для поддержания прижизненной анатомической формы головного мозга (рис. 2, 3). Рис. 2. Препарат фиксированного головного мозга человека с ТМО. Ветви средней менингеальной артерии (СМА). Рис. 3. Препарат фиксированного головного мозга человека. ТМО удалена. Видны конвекситальные вены, корковые ветви артерий головного мозга. В последующем препарат головного мозга необходимо фиксировать в 10% растворе формалина или спиртоглицериновой смеси. Для лучшей фиксации мозговой ткани предлагается инъецировать желудочковую систему фиксирующим раствором, введя тонкий катетер в IV желудочек.
Результаты
Техническая новизна предложенного нами способа заключается в быстром и недорогостоящем методе изготовления анатомических препаратов с окрашиванием сосудистого русла головного мозга человека. Полученные препараты могут быть использованы в учебном процессе при изучении нормальной и топографической анатомии головного мозга, отработке микрохирургических и/или эндоскопических доступов (рис. 2—8). Рис. 5. Препарат фиксированного головного мозга человека. Срез выполнен в аксиальной плоскости, вскрыты боковые желудочки. пВВ — правая внутренняя вена, лВВ — левая внутренняя вена, пВХВ — правая верхняя хориоидальная вена, лВХВ — левая верхняя хориоидальная вена, ПС — прямой синус. Рис. 6. Препарат фиксированного головного мозга человека. Моделирование транскаллезного доступа. Продольная щель большого мозга, вид сверху. пПМА — правая дистальная передняя мозговая (перикаллезная) артерия, лПМА — левая дистальная передняя мозговая (перикаллезная) артерия. МТ — мозолистое тело, С — серповидный отросток большого мозга. Рис. 7. Фиксированный препарат. Моделирование инфратенториального супрацеребеллярного доступа. Н — намет, лПМ — левое полушарие мозжечка, пПМ — правое полушарие мозжечка, СН — синус намета, ВВЧ — верхняя вена червя, ВВПМ — верхняя вена полушария мозжечка. Рис. 8. Нефиксированный препарат. Моделироваание эндоскопического трансназального комбинированного заднего расширенного (транскливального) и латерального расширенного доступа. ЗМА — задняя мозговая артерия, III ч.н. — глазодвигательный нерв, ВМА — верхняя мозжечковая артерия, АМ — артерии моста мозга, БА — базиллярная артерия, ВСА — внутренняя сонная артерия. Рис. 4. Внутреннее основание мозгового черепа. Венозные синусы основания черепа: МС — межпещеристый синус, ПС — пещеристый синус, ВКС — верхний каменистый синус, НКС — нижний каменистый синус, ЗС — затылочный синус, СС — синусный сток, ПопС — поперечный синус, СигС — сигмовидный синус, ВСС — верхний сагиттальный синус, СМВ — средняя менингеальная вена.
Возможные причины неудовлетворительной прокраски сосудов головного мозга:
— недостаточная промывка сосудистого русла артериальных и венозных сосудов и неполное устранение сгустков крови;
— выраженный атеросклероз магистральных артерий головного мозга;
— выраженный отек головного мозга;
— недостаточно текучий комплексный раствор и/или его быстрая полимеризация при добавлении излишнего количества отвердителя;
— недостаточное количество введенного комплексного раствора.
Препараты кровеносных сосудов с заполненными затвердевающими массами выгодно отличаются от других сохранностью естественной объемной формы сосудов.
В ХХ веке для инъекции артерий и вен применялись желатин, раствор целлоидина, натуральный каучук, эпоксидная смола, латекс. Однако сложность процесса приготовления смесей и их недостаточная эластичность составляли недостаток данных методик. Так же изготавливались коррозионные препараты, однако они недостаточно информативны c точки зрения пространственного расположения относительно структур мозга [1, 6].
В 1995 г. M. Landolfi и соавт. [3] впервые опубликовали описание своей методики заливки сосудистого русла головного мозга. В комментариях к этой статье A. Rhoton также описал свою технику, которая по существу не отличается от предложенной Landolfi.
Заключение
В настоящее время инъецирование церебральных сосудов цветными композициями — общепринятый способ, повышающий качество анатомических препаратов, используемых в учебном процессе и микрохирургических исследованиях [2—5]. Предлагаемый нами способ изготовления анатомических препаратов головного мозга человека с заполнением сосудов цветным силиконом позволяет при определенном практическом навыке получить качественные и недорогие анатомические препараты, которые можно использовать для изучения через 40—60 мин после заполнения сосудистого русла цветным силиконом.
Помимо изучения нормальной анатомии, полученные препараты планируется использовать для изучения артериальной и венозной систем при сосудистой, онкологической и другой патологии.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Комментарий
Разделы спланхнология (учение о внутренних органах) – модуль висцеральные системы;ангиология (учение о сердечно-сосудистой системе) и неврология (учение о нервной системе) – модуль интегральные системы, рассматриваются во втором семестре первого курса.
Количество часов для заочной формы обучения согласно учебному плану составляет 288. Число аудиторных занятий рассчитано для занятий в течение двух сессий первого курса - зимняя сессия 16 часов,летняя - 24 часа. В период зимней сессии студенты сдают зачет. Окончательная форма контроля знаний в период летней сессии – экзамен.
При изучении дисциплины рекомендуется конспектировать учебный материал, зарисовывать (ксерокопировать) схемы строения органов и систем органов животного организма. Возникшие в процессе работы вопросы следует выписывать в отдельную тетрадь и выяснять их на консультации.
Необходимо оформить словарь латинских терминов. Кроме учебника и другой рекомендованной литературы следует пользоваться атласами и доступными натуральными анатомическими препаратами.
Работать с натуральными анатомическими препаратами необходимо в специальной одежде (халат, колпачок, перчатки) и иметь анатомический инструментарий (пинцет, скальпель, ножницы).
Большое значение для студентов заочной формы обучения имеет самостоятельная работа в период между сессиями, которая позволит в короткие сроки и более эффективно освоить определенные разделы анатомии.
Для контроля самостоятельной работы студенты-заочники во вторую сессию должны сдать анатомический препарат и написать контрольную работу.
МЕТОДИКА ИЗГОТОВЛЕНИЯ АНАТОМИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ
Остеологические препараты готовят методом варки и мацерации.Второй метод, предусматривающий бактериальное разложение мягких тканей, требует специального помещения и оборудования. Он используется в условиях предприятий, специализирующихся на изготовлении анатомических препаратов (скелетов) мелких животных и птиц.
Метод варки прост в исполнении, приемлем при любых условиях, и может быть выполнен студентами. Этот метод заключается в варке частей тела животного в большом количестве воды с последующей очисткой костей, их мойкой и отбеливанием. Следует учитывать некоторые особенности данного способа:
1. Длительность варки определяется возрастом животного. Кости взрослого животного можно варить длительное время (4-5 часов), а молодого – в пределах часа. После варки мягкие ткани удаляются при помощи жесткой щетки. Очищенные кости хорошо промывают теплой водой с мылом. После очистки их варят повторно в пределах 30 минут. Во время повторной варки следят, чтобы кости или череп не разделились на составные элементы, так как они соединены плотной соединительной тканью.
2. Кости животных с мощным жировым депо (особенно свиньи) варят после качественной обвалки.
3. Кости, содержащие в себе жир (трубчатые), эпифизы крупных костей перед варкой перфорируют (в эпифизах просверливают мелких отверстий, а в диафизах два крупных) с целью удаления жира. Если эти правила проигнорировать, то кости после сушки пропитаются жиром и потеряют всякую музейную и учебную ценность.
После варки кости тщательно моют с использованием моющих средств, а затем отбеливают в 10%-ом растворе перекиси водорода в пределах 6 часов (мелкие) – 12 часов (крупные). После отбеливания кости сушат на воздухе.
Примерный перечень остеологических препаратов:
1. Комплект позвонков, ребер и грудин по видам животных.
2. Комплект черепов по видам домашних животных.
3. Комплект костей грудной конечности по видам животных.
4. Комплект костей тазовой конечности по видам животных.
Препараты по синдесмологии (артрологии)готовят методом препарирования связочного аппарата на нефиксированном формалином препарате (фрагмент скелета с отпиленными частями костей, в центре которого располагается сустав) с последующим выделением (бумажными подкладками) связок и фиксацией в 10%-м растворе формалина. Предварительно необходимо удалить костный мозг из мест распила. После фиксации (через 2-3 недели) препарат, ополоснув в воде, помещают в сублиматор. При его отсутствии – на открытый воздух в условия отрицательных температур (на всю зиму). Высушенный препарат монтируют на подставку и покрывают лаком. Аналогично можно приготовить препараты по связочному аппарату позвоночного столба, связкам ребер и т.д.
Примерный перечень препаратов по синдесмологии (по возможности используются разные виды животных или крупный рогатый скот):
1. Связочный аппарат локтевого сустава.
2. Связочный аппарат запястного сустава.
3. Связочный аппарат тазобедренного сустава.
4. Связочный аппарат коленного сустава.
5. Связочный аппарат заплюсневого сустава.
6. Связочный аппарат позвоночного столба.
7. Связочный аппарат позвоночно-реберного сочленения.
8. Связочный аппарат височно-челюстного сустава
9. Связочный аппарат крестцово-подвздошного сустава.
Препараты по миологии готовят методом препарирования на фиксированном в 5-10%-ном водном растворе формалина материале (части тела животного) с последующим высушиванием. Сухие препараты монтируют и покрывают лаком.
Для изготовления препарата лучше использовать труп мелкого животного: овцы, теленка, жеребенка или собаки. Обычно готовят препараты отдельных частей тела: головы, шеи, грудной стенки и конечностей. Переднюю конечность отделяют от туловища вместе с лопаткой. Обе задние – вместе с поясничными позвонками, а затем распиливают вдоль позвоночного столба. После этого осторожно снимают кожу вместе с поверхностной фасцией. В процессе изготовления препарата по миологии следует руководствоваться учебной литературой, предварительно изучив расположение и точки фиксации отдельных мышц.
Хранить препарат необходимо в свободном сосуде, не допуская искажения формы мышц. Количество фиксирующей жидкости должно превышать объем препарата не менее чем в пять раз. Препарат вынимают только на время препарирования. Изготовленный препарат помещают на окончательную фиксацию в 10%-ный раствор формалина на 7-10 суток. После окончательной фиксации материал вынимают из раствора, дают стечь, остатки жидкости удаляют с помощью сухой салфетки (марли). Препарат окончательно очищают и подготавливают к сушке.
Примерный перечень препаратов по миологии:
1. Мышцы грудной конечности с медиальной поверхности.
2. Мышцы грудной конечности с латеральной поверхности.
3. Мышцы тазовой конечности с медиальной поверхности.
4. Мышцы тазовой конечности с латеральной поверхности.
7. Мышцы грудной и брюшной стенок.
Препараты по дерматологии довольно просты в изготовлении и хранении.
Для изготовления препарата копыта или копытец от конечности взрослого животного отделяют дистальный участок, включая копыто (копытную), венечную и путовую кости помещают их на 2-3 недели в теплую воду. В результате мацерации роговая капсула (башмак) легко снимается. Ее тщательно промывают водой и высушивают. Основу кожи копыта помещают на две недели в 5%-ный водный раствор формалина, а затем выносят на мороз и вымораживают (2-3 недели).
Вымя половозрелого животного препарируют – с помощью острозаточенного скальпеля или ножа делают продольный разрез, проходящий черезвершку соска в направлении основания железы. После этого вымя промывают в воде и фиксируют в 10%-м растворе формалина в специальной емкости. Молочные железы от свиньи и собаки вырезают все целиком кожным лоскутом, промывают в воде и фиксируют в формалине.
Примерный перечень препаратов по дерматологии:
1. Строение кожи крупного рогатого скота.
2. Роговой башмак и основа кожи копыта лошади.
3. Роговой башмак и основа кожи копытца крупного рогатого скота.
4. Роговой башмак и основа кожи копытца свиньи.
7. Молочная железа свиньи.
8. Молочная железа собаки.
Препараты по спланхнологии готовят методом препарирования с последующей фиксацией в 10%-м растворе формалина. Фиксированные препараты помещают в специальную ёмкость, заливают свежим формалином, закрывают стеклом, обрабатывают герметикам.
Примерный перечень препаратов по спланхнологии:
1. Органы ротовой и носовой полости на распиле головы.
2. Пищевод и однокамерный желудок (свиньи, лошади и собаки).
3. Многокамерный желудок овцы.
4. Кишечник по видам животных.
5. Печень и поджелудочная железа по видам животных.
6. Гортани по видам животных.
7. Легкие по видам животных.
8. Органы мочевыделения по видам животных.
9. Органы размножения самцов по видам животных.
10. Органы размножения самок по видам животных.
Препараты по ангиологии и неврологии готовят по различным методикам, сложность которых не позволяет изготовить анатомический препарат без предварительной подготовки.
Примечание: изготовленные анатомические препараты должны иметь описание с русскими и латинскими названиями, сверенными с анатомическим руководством (Международная ветеринарная анатомическая номенклатура).
Лучшие препараты используются в учебном процессе или в качестве демонстрационного экспоната в анатомическом музее кафедры. Потребность кафедры в препаратах постоянно меняется, поэтому задание по изготовлению анатомиче6ского препарата необходимо согласовывать с преподавателем.
Зав. кафедрой
профессор, д.м.н.
Коробкеев А. А.
РЕФЕРАТ
на тему:
Изготовление анатомических препаратов головного мозга
Выполнил:
студент 1 курса 113 группыХанмухометов Фаиль
СОДЕРЖАНИЕ
1. Введение ……………………………………………………… 1
2. Извлечение головного мозга ………………………………… 2
3. Изготовление препарата ……………………………………… 3
4. Заключение ……………………………………………………. 7
5. Литература …………………………………………………….. 8
Введение.
Анатомические препараты — наглядные пособия, представляющие собой нормальные или патологически измененные органы,системы органов или области тела трупа человека, специально приготовленные с учебной или научной целью. Основные требования к препаратам: демонстративность и возможность длительного сохранения в близком к натуральному виде.
Для сохранения препарата предложено большое количество различных методов и их модификации. Каждый метод включает в себя ряд фаз, основными из которых являются: 1. Подготовкаобъекта (сюда входят препаровка, производство разрезов, удаление лишних тканей и пр.). 2. Обработка объекта различными хим. веществами или смесями их с целью фиксации, восстановления естественной окраски, прокрашивания тканей и пр. 3. Окончательный монтаж препарата. Сюда входят заключение в банки с консервирующими жидкостями, в герметически закрытые стеклянные камеры. Иногда препарат прямо высушивают, как,например, кости, конкременты, коррозионные препараты и т. д. Выбор метода изготовления препарата зависит: 1) от целей и назначения данного препарата; 2) от характера объекта исследования и 3) от способа дальнейшей обработки и хранения. Наиболее простым и дешевым способом является заключение объектов в формалин 5—10%-ный или в спирт после предварительной фиксации теми же жидкостями. Существеннымнедостатком формалинового хранения является побурение в нем тканей, особенно богатых кровью, вследствие перехода НЬ крови в метгемоглобин. Поэтому формалин следует применять лишь в случаях, когда не преследуется цель сохранения естественной окраски в препарате или при консервировании малокровных объектов (уродства, эмбрионы, гангрена легких и пр.). Недостатки хранения в спирте —обесцвечивание и сморщивание(богатых водой) тканей. Простым методом является мацерация и высушивание.
Извлечение головного мозга.
Прежде чем начать препарирование, необходимо тщательно изучить по учебникам данную область тела. Нельзя препарировать вслепую. Во время работы надо иметь под рукой анатомический атлас или заранее выполненные собственные рисунки. Ни в коем случае не следует торопиться и пренебрегатьтехникой безопасности. Только приобретя соответствующие навыки и достаточный опыт, можно работать быстрее. И точность зависит от правильного пользования инструментами.
Перед изготовлением препарата головного мозга необходимо его извлечь из черепа. Для изготовления препаратов центральной нервной системы головной мозг можно извлекать раздельно или в едином комплексе. Для вскрытия полости черепа подзатылочную область подкладывают деревянный брусок трехгранной формы высотой 20 см, шириной по основанию 15 см и длиной 40 см, с вырезом посередине, предназначенным для головы трупа. На первом этапе необходимо обнажить кости свода черепа за счет формирования
скальпированных лоскутов. Если труп предварительно не фиксирован, производят полукружный разрез покровов, начиная от основания сосцевидного отростка левойвисочной кости через вершину теменной области и заканчивая у основания сосцевидного отростка правой височной кости. При этом все мягкие ткани рассекаются одновременно до кости. Передний и задний лоскуты с помощью ножа или распатора отслаивают от
кости на некотором расстоянии. Затем, поочередно захватывая обеими руками и с силой оттягивая на себя, лоскуты отделяют.
Задачи: детальное изучение строения головного мозга; кровоснабжения его латеральной поверхности; овладение методикой изготовления анатомического препарата.
Методика изготовления препарата: В учебных целых для изготовления препарата был взят фиксированный в 10% растворе формалина головной мозг, на кафедре анатомии МИ ПГУ. С препарата были удалены паутинная и мягкая оболочки. Были оставлены сосуды латеральной поверхности.
Затем препарат был помещен в ёмкость с 20% раствором глицерина на 14 дней, а затем в 40% раствор глицерина на 7 дней. Далее препарат был подвергнут сушке в вытяжном шкафу на 5 дней. После сушки были удалены остатки паутинной и мягкой оболочки. Затем были окрашены артерии: внутренняя сонная (a.carotis internа) и средняя мозговая (a.cerebri mediа) и ее ветви.
Структура и форма мозга соответствуют стандартному общепринятому строению.
Головной мозг (encephalon) - передний отдел ЦНС, расположенный в полости черепа и состоящий из: продолговатого мозга (medulla oblongata), среднего мозга (mesencephalon), промежуточного мозга (diencephalon), конечного мозга (telencephalon).
Полушария разделены продольной щелью. В каждом полушарии различают 3 поверхности: верхнелатеральную, выпуклую соответственно своду черепа, медиальную - плоскую, обращенную к такой же поверхности другого полушария, и нижнюю - неправильной формы.
Поверхность полушарий имеет сложный рисунок, благодаря идущим в различных направлениях бороздам и извилинам.
Наиболее важным в курсовой работе является кровоснабжение головного мозга.
Головной мозг получает артериальную кровь из 2 источников: внутренних сонных и позвоночных артерии.
Внутренняя сонная артерия (а.carotis interna) на уровне перекреста зрительных нервов делится на 2 концевые ветви. Одна из них – средняя мозговая (а. cerebri media) – уходит вглубь латеральной борозды, кровоснабжая большую часть полушария. Ее ветви снабжают кровью островок, переднюю и заднюю центральные, нижнюю и среднюю лобную, теменную, верхнюю и среднюю височную извилины.
Средняя мозговая артерия следует сначала кнаружи, а потом вверх и немного кзади и выходит на верхнелатеральную поверхность полушарий большого мозга.
По ходу средняя мозговая артерия разделяется топографически на три части: клиновидную – от места начала до погружения в латеральную борозду, островковую, огибающую островок и проходящую в глубине латеральной борозды, и конечную (корковую) часть, выходящую из латеральной борозды на верхнелатеральную поверхность полушария (см. рис.1).
Клиновидная часть (pars sphenoidalis), самая короткая. Ее дистальной границей после погружения в латеральную борозду можно считать место отхождения латеральной лобно-базальной артерии.
Островковая часть (pars insularis) проходит вдоль всей поверхности островковой доли в глубине латеральной борозды, направляясь несколько кверху и кзади, по ходу центральной борозды островка. От этой части средней мозговой артерии отходят следующие ветви.
Латеральная лобно-базальная артерия (a. frontobasalis lateralis), направляется кпереди и кнаружи, отдавая ряд ветвей, залегающих на нижней поверхности лобной доли, по ходу глазничных борозд; кровоснабжает глазничные извилины.
Островковые артерии (аа. insulares) всего 3-4, направляются кверху, повторяя ход извилин островка; кровоснабжают островковую долю (см. рис.2).
Передняя височная артерия (а. temporalis anterior), отходит от основного ствола в области передней части латеральной ямки большого мозга и, направляясь вначале кверху, выходит через латеральную борозду на уровне восходящей ветви борозды и идет вниз и кпереди; кровоснабжает передние отделы верхней, средней и нижней височных извилин.
Средняя височная артерия (а. temporalis media), отходит от средней мозговой артерии несколько дистальней предыдущей, повторяет ее путь; кровоснабжает срединные отделы височной доли.
Задняя височная артерия (а. temporalis posterior), начинается от основного ствола в области задней части латеральной ямки большого мозга, кзади от предыдущей, и, выйдя через латеральную борозду, направляется книзу и кзади; кровоснабжает задние отделы верхней и средней височных извилин.
Конечная часть (pars terminalis), отдает наиболее крупные ветви, кровоснабжающие верхнелатеральную поверхность лобной и теменной долей.
Артерия предцентральной борозды (a. sulci precentralis), выходя из латеральной борозды, направляется кверху вдоль одноименной борозды; кровоснабжает предцентральную извилину и прилегающие к ней участки лобной доли.
Артерия центральной борозды (а. sulci centralis), отходит от основного ствола несколько дистальней предыдущей. Направляясь кверху и несколько кзади, повторяет ход центральной борозды, разветвляясь в прилегающих участках коры лобной и теменной долей.
Артерия постцентральной борозды (a. sulci postcentralis), отходит от средней мозговой артерии несколько кзади от предыдущей и, выйдя через латеральную борозду, направляется кверху и кзади, повторяя ход одноименной борозды. Отходящие от нее веточки кровоснабжают постцентральную извилину.
Передняя теменная артерия (а. parietalis anterior), выходит из латеральной борозды, поднимаясь кверху и немного кзади, отдает ряд веточек, расположенных вдоль верхнелатеральной поверхности теменной доли. Ее ветви кровоснабжают передние отделы нижней и верхней теменных долек.
Задняя теменная артерия (а. parietalis posterior), выходит из латеральной борозды в области ее задней ветви, направляясь кзади, артерия ветвится; кровоснабжает задние отделы верхней и нижней теменных долек и надкраевую извилину.
Анатомия человека: В двух томах. Том 2. Под редакцией М.Р. Сапина.- М.: Медицина, 2001г.
Атлас анатомии человека. В 4 томах. Том третий. Синельников Р.Д., Синельников Я.Р.- М.: Медицина, 1996.
Изготовление анатомических препаратов. Калмин О.В., Калмина О.А.-Пенза: Информационно-издательский центр ПГУ, 2005г
Цель исследования.Разработать дешевый и быстрый способ качественной обработки костного материала.
Материал и методы исследования.Способ основан на термическом действии кипящей воды и растворенными в ней щелочами на все мягкие ткани, находящиеся вне- и внутри кости, что способствует их отделению и ускоряет процесс расщепления жиров.
Данный универсальный аппарат для изготовления костных препаратов состоит из цилиндрического бака имеющего снаружи кожух с термопрослойкой, крышки с вытяжной трубой и двумя термометрами, системы электронагрева с подключенного к терморегулятору, контрольной трубки для отслеживания процесса мацерации, канализационного стока расположенного в центра дна бака. Внутри на дно аппарата вкладывается металлическая подставка – решетка, отделяющая нагревательный элемент от обрабатываемого материала. По верхнему краю бака имеется паз, в который вложено кольцо из микропористой резины для герметизации с крышкой.
Система терморегуляции аппарата состоит из пускотерморегуляционного устройства, нагревательного элемента контактного и контрольного термометров - находящихся в крышке и защищенных специальными чехлами. При работе аппарата в системе кипения контактный термометр отключается и температура не регулируется, а при работе в системе мацерации и отбеливания можно выставлять электрод контактного термометра на заданную температуру и при ее достижении нагревательный элемент отключается.
Процесс подготовки костного материала для его дальнейшей обработке в аппарате состоит в следующем:
1. Перед началом процесса обработки очищенные от мягких тканей кости, заложенные в бак аппарата промывают и вымачивают в воде 1-2 дня. При этом мелкие кости кисти и стопы помещают в марлевый мешочек, что бы в процессе обработки они не растерялись.
2. Промытый материал заливают свежей водой с добавлением кальценированной соды, из расчета 20 гр. соды на 1000 мл воды и начинают процесс обработки.
3. После первичной термической обработки или мацерации кости извлекают из бака и очищают от остатков мягких тканей жесткой щеткой, после промывают под проточной водой. Процесс вновь повторяют. Общее время термической обработки костей скелета взрослого человека 5 -7 часов.
Процесс мацерации костного материала проводят при необходимости сохранить хрящевую ткань. Это изготовление скелетов плодов, скелетов детского возраста и скелетов мелких животных.
Процесс мацерации осуществляется в данном универсальном аппарате следующим образом:
1. Удалив мышцы, стараясь не повредить связки и суставы, материал помещают в мешочек из синтетической ткани или специальный сетчатый полиэтиленовый контейнер и укладывают в аппарат на предварительно выставленную на его дне подставку-решетку.
2.Заложенный в аппарат материал заливают водой, закрывают герметически крышку и устанавливают контактный термометр на 37-39°С.
3. Выдерживают материал 1- 2 недели.
Контроль за ходом процесса мацерации осуществляют при помощи контрольной трубки, по которой можно наблюдать за цветом жидкости в аппарате. О завершении процесса мацерации можно судить по серо-зеленому цвету жидкости. Хорошо промыв материал можно открыть бак предварительно обеспечив достаточную вентиляцию помещения. Мацерированный материал извлекают из бака и производят механическую очистку от гумуса периодически промывая.
После очистки от мягких тканей костные препараты (как после термической обработки, таки и после мацерации) отбеливают и дезинфицируют. Эту процедуру производят прямо в аппарате. По окончании процесса отбеливания кости промывают проточной водой, не вынимая из аппарата. Промытые кости просушивают при комнатной температуре и после удаления влаги кости помещают в растворитель, залитый в специально для этого изготовленные емкости из нержавеющей стали с герметическими крышками. Обезжиривание проводят в два этапа первичное и вторичное, при этом растворитель меняют на новый.
Обсуждения. Аналогом является известный гидротермостат, предложенный доктором Механиком, состоящий из трех цилиндров различной емкости, вложенных один в другой, термометра, контрольной трубки для наблюдения за мацерационной жидкостью [5]. Недостатком этого гидротермостата является неудобство в эксплуатации и обслуживании (сложность поддержания необходимой температуры), возможность применения только на одном из этапов обработки костного материала (в процессе мацерации).Технической задачей предлагаемого изобретения является повышение удобства в эксплуатации и обслуживания, расширение функций, возможность проводить в одном устройстве обработку костного материала на всех этапах: термообработки, мацерации, промывки, отбеливании, получая при этом прочные кости без нарушения их структуры и с естественной окраской.
Самым дешевым и быстрым способом обработки костного материала - термохимический.
Данный метод позволяет значительно сократить время и улучшить качество изготовления костных и мацерированных препаратов.
Конструкция гидротермостата позволяет обрабатывать костный материал на всех этапах и позволяет сократить сроки изготовления костных препаратов, не нарушая их структуры, естественного цвета и сохраняя их прочность.
По данному методу изготовлены ряд скелетов человека разного возраста и скелетов мелких животных.
Перспективы дальнейших исследований в данном направлении.Данный метод с использованием приведенного аппарата может быть использован на кафедрах анатомии человека медицинских вузов, музеях природы, учебных заведений и т.д., требующих наличие натуральных костных анатомических препаратов.
Мацерация плода / К. А. Павлов, Е. А. Дубова, Г. М. Бурдули [и др.] // Акушерство и гинекология. – 2012. – № 2. – С. 115–119.
Ромодановский А. В. Биотермический метод обработки костей скелета / А. В. Ромодановский // Ученые записки Омского государственного педагогического института им. А. М. Горького. Вып.12. – Омск : Ом. кн. изд-во, 1959. – С. 115-118.
Руководство по препарированию и изготовлению анатомических препаратов / Н. И. Гончаров, Л. С. Сперанский, А. И. Краюшкин, С. В. Дмитриенко. – Н. Новгород : НГМА, 2002. – 192 с.
Хрусталева И. В. Техника изготовления и хранения анатомических препаратов с основами музейного дела : метод. указание для преподавателей анатомии вузов и техникумов / И. В. Хрусталева, Б. В. Криштофорова ; МГАВМиБ им. К. И. Скрябина. – М. : МГАВМиБ, 1986. – 58 с.
Ярославцев Б. М. Анатомическая техника : руководство по изготовлению анатомических и биологических препаратов / Б. М. Ярославцев. – Фрунзе : Изд-во Киргиз. гос. ун-та, 1961. – 444 с.
Читайте также: