Расскажите кратко о том как проводят контроль качества стерилизации и дезинфекции

Обновлено: 08.07.2024

Стерилизация - это процесс уничтожения всех видов микробной флоры, в том числе их споровых форм, и вирусов с помощью физических или химических воздействий. Принято считать медицинское изделие стерильным, если вероятность его бионагрузки равна или менее 10 в степени -6. Стерилизации должны подвергаться медицинские изделия, контактирующие с кровью пациента, контактирующие с раневой поверхностью и соприкасающиеся со слизистой оболочкой и могущие вызвать нарушение ее целостности. Стерилизация -сложный процесс, для успешной реализации которого необходимы следующие требования:

- соответствующие упаковочные материалы;

- соблюдение правил упаковки медицинских изделий;

- соблюдение правил по загрузке стерилизатора упаковками с медицинскими изделиями;

- адекватное качество и количество стерилизуемого материала; соответствующая работа оборудования;

- соблюдение правил хранения, обращения и транспортировки простерилизованного материала.

Процесс стерилизации медицинских инструментов и изделий от момента окончания операции и до стерильного хранения или следующего применения включает в себя выполнение мероприятий в определенной последовательности. Все этапы должны быть строго соблюдены для обеспечения стерильности и длительного срока жизни инструментов. Схематично это можно представить следующим образом:

Отложить инструменты после использования Дезинфекция -> Механическая очистка инструмента -> Проверить на повреждения -> Промыть инструменты Сушка -> Упаковать в стерилизационную упаковку -> Стерилизация -> Стерильное хранение/применение. При применении стерилизационной упаковки (бумага, фольга или стерилизационные контейнеры) инструменты могут храниться в стерильном виде и позднее использоваться от 24 часов до 6 месяцев.

В лечебно-профилактических учреждениях применяется несколько форм организации стерилизации: децентрализованная, централизованная, осуществляемая в ЦСО, и смешанная. В амбулаторной стоматологической практике чаще применяется децентрализованная стерилизация (особенно в частных клиниках). Централизованная стерилизация характерна для районных стоматологических поликлиник и больших частных клиник. Децентрализованная стерилизация имеет ряд существенных недостатков, влияющих на ее эффективность. Предстерилизационная обработка изделий выполняется чаще всего вручную и при этом качество очистки изделий оказывается низким. Контроль за соблюдением технологии проведения стерилизации, правил упаковки, загрузки изделий в стерилизаторы и за эффективностью работы оборудования в условиях децентрализованной стерилизации затруднен. Все это приводит к снижению качества стерилизации. При применении централизованной формы стерилизации удается достичь более высоких результатов стерилизации за счет совершенствования существующих и внедрению новейших методов стерилизации (механизация мойки инструментов и медицинских изделий, облегчение работы среднего медицинского персонала и др.). В централизованном стерилизационном отделении выделяют: моечную, дезинфекционную, упаковочную и подразделение для стерилизации и раздельного хранения стерильных предметов. Температура воздуха во всех подразделениях должна быть от 18°С до 22°С, относительная влажность - 35-70%, направление потока воздуха - от чистых к относительно загрязненным зонам.

Методы стерилизации

Преимущества и недостатки различных методов стерилизации представлены в таблице.

Таблица. Преимущества и недостатки различных методов стерилизации

Все изделия перед стерилизацией подвергаются предстерилизационной очистке.

При стерилизации физическими методами (паровым, воздушным) изделия, как правило, стерилизуют упакованными в упаковочные материалы, разрешенные в установленном порядке к промышленному выпуску и применению в России. При паровом методе могут применяться стерилизационные коробки без фильтров и с фильтром. При воздушном методе, а также при паровом и газовом методах допускается стерилизация инструментов в неупакованном виде.

Паровой метод стерилизации

Таблица. Режимы и контроль паровой стерилизации

Воздушный метод стерилизации

Стерилизация при воздушном методе осуществляется сухим горячим воздухом температурой 160°, 180° и 200°С (табл.).

Таблица. Режимы и контроль стерилизации сухим горячим воздухом

Воздушным методом стерилизуют медицинские изделия, детали приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов, стекла с пометкой 200°С, изделия из силиконовой резины. Перед стерилизацией воздушным методом изделия подвергаются предстерилизационной очистке и обязательно высушиваются в сушильном шкафу при температуре 85°С до исчезновения видимой влаги. Полный цикл составляет до 150 минут. Преимущество стерилизации горячим воздухом по сравнению с паровым методом состоит в низкой себестоимости оборудования. Недостатками являются: длинный полный цикл стерилизации (не менее 30 мин), опасность повреждения инструментов высокими температурами, невозможность стерилизации тканей и пластмасс, только один контрольный параметр - температура, высокие энергозатраты.

Гласперленовая стерилизация

Гласперленовая стерилизация осуществляется в стерилизаторах, стерилизующим средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков при рабочей температуре 190-330°С. При стерилизации сухие инструменты помещают в среду раскаленных стеклянных гранул на глубину более 15 мм. Этим методом могут быть простерилизованы только инструменты, размер которых не превышает 52 мм, они должны быть целиком погружены в камеру на 20-180 с в зависимости от размера. После стерилизации изделия используются сразу по назначению. Высокая рабочая температура и невозможность полного погружения инструментов в стерилизующую среду ограничивают возможность стерилизации широкого ассортимента медицинских изделий.

Стерилизация газовым методом

Для газового метода стерилизации применяют смесь окиси этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1 : 2,5 соответственно (ОБ), окись этилена, пары раствора формальдегида в этиловом спирте, озон. Стерилизацию смесью ОБ и окисью этилена осуществляют при температуре не менее 18°С, 35°С и 55°С, парами раствора формальдегида в этиловом спирте при температуре 80°С. Перед газовой стерилизацией изделия после предстерилизационной очистки подсушивают до исчезновения видимой влаги. Удаление влаги из полостей изделий производят с использованием централизованного вакуума, а при его отсутствии с помощью водоструйного насоса, подсоединенного к водопроводному крану. При стерилизации ОБ и окисью этилена удаляют воздух до давления 0,9 кгс/см2. При использовании портативного аппарата после окончания стерилизации его выдерживают в вытяжном шкафу на протяжении 5 часов.

Озоном, вырабатываемым в озоновом стерилизаторе С0-01 -СПБ, стерилизуют изделия простой конфигурации из коррозионностойких сталей и сплавов, в неупакованном виде при температуре не более 40°С. Цикл стерилизации (выход на режим, стерилизация, дезактивация) составляет 90 минут. После стерилизации инструменты используют по назначению сразу без дополнительного проветривания. Срок сохранения стерильности изделий 6 часов, при соблюдении правил асептики. При упаковке в стерильную двухслойную х/б ткань срок стерильности составляет 3 суток, а при содержании в камере с бактерицидными облучателями - 7 суток.

Инфракрасное воздействие

Новые методы стерилизации нашли свое отражение в стерилизаторе инфракрасной стерилизации, предназначенном для стерилизационной обработки металлических медицинских инструментов в стоматологии, микрохирургии, офтальмологии и других областях медицины.

Высокая эффективность ИК-стерилизующего воздействия обеспечивает полное уничтожение всех исследованных микроорганизмов, в том числе таких как: S. epidermidis, S. aureus, S. sarina flava, Citrobacter diversus, Str. pneumonia, Bacillus cereus.

Быстрый, в течение 30 секунд, выход на режим 200±3°С, короткий цикл стерилизационной обработки - от 1 до 10 минут, в зависимости от выбранного режима, наряду с низкой энергоемкостью, несравнимы по эффективности ни с одним из применяемых до настоящего времени методов стерилизации. Стерилизатор ИК-стерилизации прост в эксплуатации, не требует специально обученных операторов, а сам метод относится к экологически чистым технологиям. В отличие от паровой, воздушной или гласперленовой стерилизации, при ИК-стерилизации отсутствует агрессивное воздействие стерилизующего агента (инфракрасного излучения) на режущий инструмент.

Ионизирующее излучение

Активно действующими агентами являются гамма-лучи. В ЛПУ ионизирующее излучение не используется для дезинфекции. Его используют для стерилизации изделий однократного применения при производстве в заводских условиях.

Стерилизация растворами химических средств

Данный метод применяют для стерилизации изделий, материалы которых не являются термоустойчивыми, и применение других официально рекомендуемых методов невозможно. Недостатком данного метода является то, что изделия нельзя стерилизовать в упаковке и по окончании стерилизации их необходимо промыть стерильной жидкостью (водой или 0,9% раствором натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может привести к вторичному обсеменению микроорганизмами простерилизованных изделий. Для химических средств применяют стерильные емкости из стекла, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, металлов, покрытых эмалью. Температура растворов, за исключением специальных режимов применения перекиси водорода и средства Лизоформин 3000, должна быть не менее 20°С для альдегидсодержащих средств и не менее 18°С для остальных средств (табл.).

Таблица. Стерилизация растворами химических средств

Разъемные изделия стерилизуют в разобранном виде. Во избежание нарушения концентрации стерилизационных растворов, погружаемые в них изделия должны быть сухими. Цикл обработки составляет 240-300 минут, что является существенным недостатком метода. Кроме того, недостатком является высокая стоимость дезинфектантов. Преимущество - нет специального оборудования. Промытые стерильные изделия после удаления жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или после упаковки в двухслойную стерильную х/б бязь, помещают в стерильную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

Все работы по стерилизации изделий проводятся в асептических условиях в специальных помещениях, подготавливаемых как операционный блок (квар-цевание, генеральная уборка). Персонал использует стерильную спецодежду, перчатки, очки. Ополаскивание изделий проводится в 2-3 сменах стерильной воды, по 5 минут в каждой.

Контроль эффективности стерилизации

Контроль эффективности стерилизации осуществляется физическими, химическими и бактериологическими методами.

К физическим методам контроля относятся: измерение температуры, давления и времени применения стерилизации.

К 1 классу отнесены индикаторы внешнего и внутреннего процесса, которые размещаются на наружной поверхности упаковки с медицинскими изделиями или внутри наборов инструментов и операционного белья. Изменение цвета индикатора указывает на то, что упаковка подверглась процессу стерилизации.

Ко 2 классу относят индикаторы, которые не контролируют параметры стерилизации, а предназначенные для применения в специальных тестах, например, на основании таких индикаторов оценивают эффективность работы вакуумного насоса и наличие воздуха в камере парового стерилизатора.

К 3 классу относятся индикаторы, при помощи которых определяется один параметр стерилизации, например, минимальная температура. Однако они не дают информации о времени воздействия температуры.

К 5 классу относят интегрирующие индикаторы, реагирующие на все критические параметры метода стерилизации.

Все операции с индикаторами - выемка, оценка результатов - осуществляются персоналом, проводящим стерилизацию.

Оценку и учет результатов контроля проводят, оценивая изменения цвета начального состояния термоиндикаторной метки каждого индикатора, сравнивая с цветовой меткой Эталона сравнения.

Если цвет конечного состояния термоиндикаторной метки всех индикаторов соответствует цветовой метке Эталона сравнения, это свидетельствует о соблюдении требуемых значений параметров режимов стерилизации в стерилизационной камере.

Допускаются различия в интенсивности глубины окраски термоиндикаторной метки индикаторов, обусловленные неравномерностью допустимых значений температуры в различных зонах стерилизационной камеры. Если термоиндикаторная метка хотя бы одного индикатора полностью или частично сохранила цвет, легко отличимый от цвета эталонного состояния, это свидетельствует о несоблюдении требуемых значений параметров режимов стерилизации в стерилизационной камере.

Индикаторы и Эталоны сравнения должны совпадать по номерам партий. Запрещается оценивать результаты контроля стерилизации, используя индикаторы разных партий.

Оценку соответствия изменения цвета термоиндикаторной метки в сравнении с Эталоном проводят при освещенности не менее 215 лк, что соответствует матовой лампе накаливания 40 Вт, с расстояния не более 25 см. Для проведения бактериологического контроля в настоящее время применяются биотесты, имеющие дозированное количество спор тест-культуры. Существующая методика позволяет оценивать эффективность стерилизации не ранее чем через 48 часов, что не позволяет применять уже простерилизованные изделия до получения результатов бактериологического контроля.
Биологический индикатор представляет собой препарат из патогенных споро-образующих микроорганизмов с известной высокой устойчивостью к данному типу стерилизационного процесса. Задачей биологических индикаторов является подтверждение способности стерилизационного процесса убивать устойчивые микробные споры. Это наиболее критичный и достоверный тест стерилизационного процесса. Применяются биологические индикаторы в качестве контроля загрузки: если результат положительный (микробный рост), то использовать данную загрузку нельзя и необходимо отозвать все предыдущие загрузки до последнего отрицательного результата. Для получения достоверного биологического ответа следует использовать только те биологические индикаторы, которые соответствуют международным стандартам ЕК 866 и ISO 11138/11135. При использовании биологических индикаторов возникают определенные трудности - необходимость наличия микробиологической лаборатории, обученного персонала, продолжительность инкубации многократно превышает длительность стерилизации, необходимость карантина (невозможность использования) простерилизованных изделий до получения результатов. Из-за указанных выше трудностей в применении биологического метода в амбулаторной стоматологической практике обычно используется физический и химический метод контроля эффективности стерилизации.

Источник: Особенности дезинфекции и стерилизации в амбулаторной стоматологии, Мороз Б.Т., Мироненко О.В. 2008г.

Контроль стерилизации предусматривает проверку параметров режимов стерилизации и оценку ее эффективности. Контроль работы стерилизаторов осуществляют тремя способами:

- физический метод предусматривает контроль параметров работы стерилизационного оборудования таймерами, датчиками температуры, давления и относительной влажности и др. Проводится при проведении каждого цикла стерилизации. Проверку температурного режима осуществляют с помощью максимальных термометров, которые помещают в контрольные точки стерилизатора.

- химический метод: принцип действия химических индикаторов основан на изменении агрегатного состояния индикаторного вещества и (или) цвета индикаторной краски при действии определенных параметров стерилизации, строго специфичных для каждого типа индикаторов в зависимости от метода и режима стерилизации. Химические индикаторы размещают в контрольные точки стерилизатора. Проводится ежедневно при проведении каждого цикла стерилизации.

- бактериологический метод основан на гибели споровых форм тест-культур, специфичных для каждого из используемых методов стерилизации. Проводится ежемесячно, а также обязательно после установки и наладки оборудования, проведения любого объема ремонтных работ, при получении неудовлетворительных результатов химического мониторинга. Для проведения бактериологического контроля можно использовать приготовленные в лаборатории и готовые биологические индикаторы, которые используются в соответствии с прилагаемой инструкцией по применению.

Результаты всех методов контроля работы стерилизаторов регистрируют в журнале. Основанием для заключения об эффективности работы стерилизаторов является отсутствие роста тест-культуры при бактериологическом исследовании всех биотестов в сочетании с удовлетворительными результатами физического и химического контроля.

Сменный блок полотенец BINGO GRAND, 250 шт, (17см*25см)

Сменный блок BINGO GRAND используется отдельно либо в диспенсерной системе BINGO GRAND. Предназначен для пропитки чистящим, дезинфицирующим средством .

Шприц SFM, инъекционный

Макси-Септ Аква

Кожный антисептик для гигиенической и хирургической обработки рук. Предназначен для гигиенической обработки рук - медицинского персонала в лечебно-п.

Держатель настенный для диспенсерной системы BINGO GRAND, 5,7 л

Настенный держатель BINGO GRAND предназначен для диспенсерной системы "BINGO GRAND" объемом 5,7 литра. Технические характеристики: Модель: BINGO GRAN.

Крепеж прикроватный металический Эрисан

Держатели предназначены для использования кожного антисептика Изосепт или Олсепт С в ёмкостях 500 мл. с дозировочной помпой. Антикоррозийный, прочный.

Фильтр к КФ (2 шт.)

Фильтры для цилиндрических медицинских биксов серии КФ и КСКФ обеспечивают возможность проведения стерилизации предметов и материалов медицинского наз.

О качестве дезинфекции судят по отсутствию на изделиях медицинского назначения после ее проведения золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бактерий группы кишечной палочки. Контролю подлежит 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования (но не менее 3 единиц).

Контроль качества дезинфекции осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят с поверхности изделий медицинского назначения до проведения дезинфекции и после нее. Взятие смывов производят стерильными марлевыми салфетками, смоченными в стерильной воде.

Смывы по 0,1 мл наносят на поверхность желточно-солевого, кровяного агара и на среду Эндо. Посевы выдерживают в термосе при температуре 37°С. Результаты учитывают через 48 часов. При наличии роста микроорганизмов на агаре идентификацию выделенным микроорганизмом проводят в соответствии с действующими методическими документами. Дезинфекцию считают эффективной при отсутствии роста микроорганизмов.

Контроль качества предстерилизационной очистки

Контроль качества предстерилизационной очистки проводится путем постановки азопирамовой или амидопириновой проб на наличие остатков крови и фенолфталеиновой на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства.

Фенолфталеиновая проба

Для постановки пробы используют 1%спиртовой р-р фенолфталеина, который состоит из 60 г спирта, 40 г дистиллированной воды и 1г фенолфталеина. Спиртовой раствор наносится пипеткой на вату, которой протираются обработанные инструменты.

При наличии синтетических моющих средств появляется розовoe окрашивание. При этом всю партию изделий подвергается снова ополаскиванию в проточной, а за тем дистиллированной воде.

Азопирамовая проба

Для приготовления 1 л р-ра азопирама берут 100,0 азопирама и 1,0-1,5 солянокислого анилина, вещества смешиваются и заливаются 96° этиловым спиртом до объема 1 литр. Азопирам хранится при температуре +18+23° не более одного месяца. Умеренное пожелтение реактива в течение этого времени, без выпадения осадка, качество не снижается.

Непосредственно перед проверкой качества очистки изделий готовят рабочий раствор, смешивая равные объемы количества исходного раствора и 3% перекиси водорода. Наносятся на вату и протирают инструмент.

В присутствии следов крови не позднее, чем через 1 мин после контакта реактива с загрязненными инструментами появляется вначале фиолетовое окрашивание, переходящее в розово-сиреневое или буроватое (буроватое при наличии на инструментах ржавчины).

Проба с азопирамом по чувствительности превышает в 10 раз амидопириновую пробу.

Амидопириновая проба

Перед постановкой пробы в тигельке смешивают равные количества 5% спиртового р-ра амидопирина, 30% р-ра уксусной кислоты и 3% р-ра перекиси водорода. Появление сине-зеленого окрашивания при нанесении реактива на изделие свидетельствует о наличии остатков крови. Реактив проверяют на скрытую кровь также как и в предыдущем случае.

При положительной реакции на скрытую кровь всю партию изделий снова подвергают повторной обработке.

Контролю ежедневно подвергают 3% от одновременно обработанных изделий одного назначения (партии), но не менее 3-5 проб.

Контроль качества предстерилизационной очистки проводят центры Государственного санитарно-эпидемиологического надзора и дезинфекционные станции не реже 1 раза в квартал.

Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦС) ежедневно, в отделениях - не реже 1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра ЦС отделения.

Контроль качества стерилизации

Контроль работы предусматривает проверку параметров режимов стерилизации и оценки ее эффективности. Контроль параметров режимов стерилизации проводят физическим (с помощью контрольно-измерительных приборов) и химическим (с использованием химических индикаторов) методами. Эффективность стерилизации оценивают на основании результатов бактериологических исследований, проводимых при применении биотестов и контроле стерильности изделий, подвергнутых стерилизации.

Контроль качества стерилизации изделий медицинского назначения осуществляют проведением проверки температурного режима. Проверку температурного режима осуществляют с помощью термометров.

Для контроля температуры используют также химические индикаторы. Индикаторы представляют собой полоску бумаги с нанесенным на нее индикаторным слоем и предназначены для оперативного визуального контроля совокупности параметров (температура, время) режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов.

Медицинский персонал, использующий средства физического и химического контроля, регистрирует результаты контроля в журнале по форме № 257/у.

Бактериологический контроль работы стерилизационной аппаратуры осуществляют с помощью биотестов на основании гибели спор термоустойчивых микроорганизмов. Биотесты представляют собой дозированное количество спор тест-культуры в упаковке, которая помещается в стерилизационную камеру.

Основанием для заключения об эффективной работе стерилизационной аппаратуры является отсутствие роста тест-культуры при бактериологических исследованиях всех биотестов в сочетании с удовлетворительными результатами физического и химического контроля.

ГЛАВА V. Методы и способы обработки инструментария и

Изделий медицинского назначения в стоматологии

Обработка стоматологического инструментария

Инструменты, входящие в терапевтический и ортопедический наборы (зеркала зубные, пинцеты, зонды, гладилки, штопферы, экскаваторы, шпатели) после проведения дезинфекции, предстерилизационной обработки по обычной методике, стерилизуют паровым (в автоклаве) и воздушным (в сухожаровом шкафу) способами.

Стекла для замешивания пломбировочного материала и цемента

После проведения дезинфекции и предстерилизационной обработки стерилизуются паровым методом (автоклавированием).

Скелетные карпульные металлические инъекторы

Инъекторы карпульные металлические дезинфицируются до и после использования путем протирания стерильным ватным тампоном, смоченным в 70° спирте. По окончании смены они подвергаются дезинфекции, предстерилизационной обработке, стерилизации.

Не до конца использованную карпулу с анестетиком применять повторно запрещено, даже если набирать раствор, другой иглой.

Наконечники к бормашинам и световоды

Светоотверждающих ламп

Наконечниками после каждого пациента снимают и тщательно протирают наружные поверхности и канал для бора стерильным тампоном двукратно через 15 мин, смоченным 3% р-ром хлорамина, или 70° спиртом.

Световоды светоотверждающих ламп тщательно протирают двукратно с интервалом 15 мин 70° спиртом.

Боры, эндодонтический инструментарий и абразивный

Материал

Мелкий инструментарий после проведения дезинфекции, предстерилизационной обработки по обычной методике, стерилизуют паровым (в автоклаве) и воздушным (в сухожаровом шкафу) способами, а так же в гласперленовых стерилизаторах.

Пульпоэкстракторы, каналонаполнители и разделительные матрицы повторно не используются, т. к. являются разовым инструментарием. Отработанные инструменты сбрасываются в плевательницу и обеззараживаются вместе с ее содержимым (см. п. 5.17.).

Новые инструменты используются только после проведения предстерилизационной обработки истерилизации.

Держатели

Держатели для щеточек, используемых для реставрации, и в работе с самотвердеющими пластмассами после каждого пациента тщательно протирают стерильным тампоном двукратно через 15 мин, смоченным 3% р-ром хлорамина, или 70° спиртом.

Щёточки одноразовые после дезинфекции утилизируются как одноразовый инструмент.

Дезинфекцией называют совокупность мер, предпринимающихся для эффективного уничтожения и обеззараживания микроорганизмов. Впервые человек понял важность проведения дезинфекции во время массовых эпидемиологических заболеваний, от которых погибла треть населения средневековой Европы.

Возникновение разных средств, специально предназначенных для проведения медицинской дезинфекции, позволило максимально снизить количество заражений, а также предотвратить распространение эпидемий опасных болезней.

Цель дезинфекции – профилактика и предотвращение распространения инфекционных заболеваний, а также формирование приемлемых условий лечения и жизнедеятельности. Вовремя проведённые дезинфекционные мероприятия позволяют облегчить лечение болезней.

Предстерилизационная очистка

Это 2-й этап обеззараживания медицинского инструментария, который сразу следует за дезинфекцией. Цель её проведения – удаление загрязнений всех видов. Уровень качества предстерилизационной противоэпидемической очистки проверяется рядом проб. Так, в соответствие с санитарными требованиями берутся пробы на присутствие остатков крови и прочих видов биологического материала на инструментарии, а также на наличие определённого количества порошка и других веществ.

Для того, чтобы обеспечить избавление от микроорганизмов используются следующие средства (антисептики):

Аламинол. Используется для промывки изделий из пластмасс, металлов, включая резервуары и контейнеры.
Анолиты. Применяются для очистки стоматологических инструментов, изделий из пластмассы.
Векс-Сайд. Используется для удаления с хирургических инструментов клеток, имеющих вирусную природу.
Раствор перекиси водорода. Применяется для очистки многократно использующихся в лаборатории изделий из коррозионностойких металлов, пластмасс, стекла, резин.

Санпин даёт исчерпывающий список средств для очистки перед стерилизацией. Они приведены в инструкциях.

Стерилизация

Так условно называется комплекс мер, предпринимаемых для уничтожения бактерий, грибка, вирусов на предметах, используемых в медицинских учреждениях. Особенно тщательно стерилизуются инструменты и материалы, которые будут вступать в контакт с раной больного. Это предотвращает возникновение заражения и распространение патогенных заболеваний.

Виды стерилизации напрямую зависят от материала, из которого изготовлен медицинский предмет. Существует их следующая классификация:

Воздушная. Предполагает собой обработку сухим горячим воздухом. Инструментарий из металла и стекла помещается в специальный сухожаровой шкаф. Режимы стерилизации бывают следующие: при 180 градусах предметы обрабатываются в течение 60 минут, при 160 – 150 минут.
Паровая (паровоздушная). Это способ уничтожения бактерий и прочих микроогранизмов на медицинский предметах посредством использования горячего пара. Такой вид стерилизации применяется для металлических инструментов, резиновых перчаток, стеклянных шприцев и пробирок, перевязочного материала. Режимы: 132 градуса Цельсия – 20 минут, 120 градусов Цельсия – 45 минут.
Химическая. Согласно нормативам – это помещение предметов и инструментария в раствор антисептика. Таким способом можно очищать изделия из резины, стекла и прочих материалов, не выдерживающих обработки теплом. Используются Дезоксин, 70% раствор спирта и 2% раствор хлоргексидина.
Газовая. Некоторые газы способны оказывать бактерицидный эффект на стерилизуемый предмет. Больше всего такой метод подходит для очистки предметов из полимеров. Специалисты используют при такой стерилизации окись этилена.
Лучевая. Данный способ стерилизации проходит с помощью ионизирующего излучения или ультрафиолетового облучения. Применяется для обеззараживания эндопротезов, одноразовых медицинских изделий, шовных материалов.

Поэтапный контроль

Контроль за качеством проведённых дезинфекционных мероприятий проводится на каждом этапе и зависит от его особенностей.

Виды контроля дезинфекции:

Визуальный. Проводится сотрудником дезстанции, который должен выяснить состояние объекта, а также правильность следования инструкциям и алгоритмам дезинфекции.
Химический контроль. Предполагает забор проб дезинфицирующих растворов на содержание активного хлора. Специалист обязательно отмечает дату пробы, концентрацию раствора, указанную на этикетке.
Бактериологический контроль. Внезапное мероприятие для персонала: пробы забираются не позже 60 минут после окончания дезинфекции. Специалисты берут смывы с медицинских инструментов, посуды, с рук медперсонала.

Определение качества предстерилизационной обработки происходит посредством следующих методов:

Азопирамовая проба. Определяет следы крови, наличие на инструментах растительных веществ, стирального порошка, кислот и коррозии. Если проба положительная, то вся партия предметов проходит повторную обработку до того момента, пока не будет получен нужный результат. Проба считается положительной в том случае, если раствор меняет свой окрас в течение 60 секунд.
Фенолфталеиновая проба. Реактив пипеткой наносится на контролируемый предмет. Результат появляется в течение 120 секунд. Проба признаётся отрицательной в том случае, если реактив не меняет свой цвет.

Контроль процесса стерилизации проводится посредством двух методов:

Физический контроль проводится при помощи специальных приборов, определяющих уровень давления, температуры, а также время.
При химическом контроле используются специальные тесты и индикаторы. Их помещают в специальные стерилизационные коробки (боксы). В случае, если контроль дал нежелательные результаты, все материалы считаются нестерильными и вновь подвергаются серии профилактических мероприятий.
Эффективность стерилизации также может определяться бактериологическим методом. В его ходе используются стерилизационные биотесты. Заключение делается на основании скорости гибели тест-микроорганизмов.

Официальные документы

При проведении дезинфекции необходимо учитывать требования, размещённые в специализированных документах:

Инструкция по организации контроля за проведением дезинфекции.
Инструкция по проведению всех этапов дезинфекции.
Инструкция по мерам безопасности, предпринимаемым во время работы с антисептиками и прочими средствами.
Инструкцию по расчёту и определению потребности в средствах для проведения дезинфекции в лечебных учреждениях.

Ответственность

Согласно приведённым выше документам, вся ответственность за выполнение норм и правил дезинфекционных мероприятий возлагается на непосредственных исполнителей. Ответственным за государственный надзор назначается главный врач лечебного учреждения.

Распространённые ошибки при дезинфекции

Использование средств в неправильной пропорции при изготовлении растворов.
Неправильный временной период использования созданного раствора, нарушение методических указаний.
Несоответствующий методике проведения дезинфекционных мероприятий выбор способа дезинфекции для инструментария. Подобная ошибка может привести к распространению спорообразующих и прочих микроорганизмов.
Неправильная последовательность действий. Нарушение очередности операций существенно снижает эффект от деконтаминации, повышая шансы на определение положительной пробы во время контроля.
Несоответствующая методике экспозиция (размещение) раствора на поверхности обрабатываемого предмета.
Некоторые части инструментария и вовсе не подвергаются обработке.

Принятие дезинфекционных мер позволяет избежать возникновения осложнений во время лечения и в общем повысить его качество. Правильное следование всем этапам и рекомендациям обеспечивает эффективность проводимых процедур.

Читайте также: